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=경력=
* 2022 ~ 차세대과학기술한림원 회원
* 2012 ~ 2015 서울대학교 화학부 연수연구원
* 2014 ~ 2015 기초과학연구원 유전체교정연구단
= 주요연구 =
==로렌조 오일병의 유전자 교정 치료 가능성 확인=부작용 없는 [[유전자가위]] 개발에 초석(2021.0810)<ref><뉴스H> 2021.0910.01 08 [http://www.newshyu.com/news/articleView.html?idxno=1003944 1004192 배상수 교수 연구팀, 로렌조 오일병의 유전자 교정 치료 가능성 확인부작용 없는 유전자가위 개발에 초석 다져]</ref>)===* 배상수 교수와 서울대 화학부 김성근 교수 공동연구팀이 크리스퍼 유전자가위 변이체가 타깃과 타깃이 아닌 DNA 염기서열을 구별하는 원리를 발견했다.* 공동연구팀은 표적이탈 현상을 크게 줄인 변이체 6종이 DNA 염기서열에 어떻게 작용하는지를 단일분자 프렛(Single Molecule FRET) 기술을 통해 관찰했다. 그 결과 각 변이체가 타깃 DNA만 선별해 절단하는 원리를 설명할 수 있는 새로운 동역학 모델을 개발했으며, 이를 통해 유전자가위가 염기서열을 절단하는 과정에서 보여주는 단계적 타깃 선별방식에 대한 새로운 사실들도 밝혀냈다.* 이번 연구는 한국연구재단의 중견연구자지원사업 등의 지원으로 수행됐으며, 핵산연구 분야 저명 국제학술지 ‘Nucleic Acids Research’ (IF 16.971)에 9월 23월자로 온라인 게재됐다.
== [[유전자염기서열디자인분석도구]] ==로렌조 오일병의 유전자 교정 치료 가능성 확인(2021.08<ref><뉴스H> 2021.0509. 14 발표 01 [[유전자염기서열디자인분석도구http://www.newshyu.com/news/articleView.html?idxno=1003944 배상수 교수 연구팀, 로렌조 오일병의 유전자 교정 치료 가능성 확인]] 참조</ref>)===
* 배상수 교수 연구팀과 세브란스병원 재활의학과 조성래 교수가 로렌조 오일병 환자의 유래 세포와 동물 모델을 유전자가위를 통해 변이 유전자를 교정하는 데 성공했다.
* 공동 연구팀은 ALD 환자에서 변이 유전자 교정하기 위해 유전자가위를 이용한 유전자 교정치료를 환자 유래 세포와 동물모델에 처음으로 적용했다.
* 보건복지부 임상연구인프라조성사업의 지원을 받아 진행된 이번 연구는 유전자 치료 분야의 대표 학술지 몰레큘러 테라피(Molecular Therapy) 최신호에 게재됐다.
=== [[유전자염기서열디자인분석도구]] ===2021.05. 14 발표 [[유전자염기서열디자인분석도구]] 참조 ===초정밀 유전자 염기교정 기술 개발(2021.07)<ref><뉴스H> 2021.07.07 [http://www.newshyu.com/news/articleView.html?idxno=1003527 배상수 교수, 초정밀 유전자 염기교정 기술 개발]</ref>===
* 주변 염기에 영향을 주지 않고 특정 DNA 염기 하나만 교정할 수 있는 초정밀 유전자 염기교정 기술을 개발
* 표적 위치에 있는 DNA 염기를 다른 염기로 치환할 수 있는 기술인 염기교정 유전자가위(Base editor)가 주변의 다른 염기인 시토신 시토신을 치환한다는 부작용을 해결
* 이번 연구결과는 생명공학 분야 세계적 학술지인 「Nature Biotechnology」(IF 54.908)에 2일 온라인 판에 게재
===DNA 염기 하나만 바꾸는 유전자가위 규명(2019.9)<ref>[http://www.newshyu.com/news/articleView.html?idxno=736244 <뉴스H> 2020.01.06 배상수 교수, 아데닌 염기교정 유전자가위 규명하다]</ref>===
* 아데닌에만 작용해야 할 염기교정 유전자가위가 사이토신(C)을 잘라낸다는 문제점을 최초 발견
* 배 교수팀 - 김진수 기초과학연구원(IBS) 유전체 교정 연구단과 [[공동연구]]
* 이번 연구결과(논문명 : Adenine base editors catalyze cytosine conversions in human cells)는 「네이처 바이오테크놀로지(Nature Biotechnology), IF=35.724」 2019.09.24일에 온라인 게재됐다.
===유전자 교정기술 핵심 단백질 절단 메커니즘 규명(2018.07.24)<ref><뉴스H> 2018.08.01 [http://www.hanyang.ac.kr/surl/xKgh 배상수 교수 공동연구팀, 유전자 교정기술 핵심 단백질 절단 메커니즘 규명]</ref> ===
# GIST는 배 교수팀, 광주과학기술원(GIST) 고등광기술연구소 이상화 박사 연구팀, 한국과학기술연구원(KIST) 테라그노시스 연구단 정철현 박사팀이 공동으로 크리스퍼(CRISPR) 기반 유전자 교정기술의 핵심 단백질 중 하나인 Cas12a의 DNA 표적 탐색 및 절단 메커니즘을 규명했다고 밝혔다. 단일분자 형광 이미징 기술을 이용해 새로운 크리스퍼 기반 기술들의 핵심 단백질 중 하나인 Cas12a(또는 Cpf1)가 표적 DNA를 탐색하고 절단하는 전 과정을 실시간으로 관찰하는데 성공한 것. 크리스퍼 유전자 가위를 이용한 유전자 교정기술은 유전자 치료, 새로운 식물 육종 개발 등 다양한 분야에 폭넓게 이용 및 빠르게 발전하고 있으며, 대표적으로 Cas9 유전자 가위가 사용되고 있다. 하지만 일반적으로 크리스퍼 유전자 가위는 표적 DNA와 유사한 염기서열을 가진 DNA까지도 자르는 표적이탈효과(off-target) 및 전체 유전체 내 작동가능한 표적이 제한되는 문제 등이 한계로 지적되고 있다. 이러한 기술적 한계를 극복하기 위해 최근에는 다양한 변종 단백질을 발굴 및 개발하여 유전자 교정기술을 향상하고자 노력하고 있다. 그 중에서도 Cas12a 단백질은 Cas9에 비해 표적 특이성이 높다고 알려져 있어 크게 각광받고 있다. 때문에 Cas12a의 상대적으로 높은 표적 특이성을 이해하고 보다 향상된 유전자 가위를 개발하기 위해서는 Cas12a의 표적 탐색 및 절단 메커니즘을 규명하는 연구가 필요하다.
# 배 교수 공동 연구팀은 이번 연구에서 단일분자 형광 이미징 기술을 이용해 Cas12a의 표적 탐색 및 절단의 전 과정을 실시간으로 관찰하는데 성공했다. 이를 통해 Cas12a 단백질이 긴 DNA 상에서 1차원 확산 운동을 통해 특정 표적을 탐색하고, 표적 DNA와 만나 안정된 결합을 한 후, 비표적 가닥과 표적 가닥 순서로 시간 차를 두고 순차적으로 절단한다는 사실을 세계 최초로 규명했다. <br />배상수 교수(한양대, 공동교신저자), 이상화 박사(GIST, 공동교신저자), 정철현 박사(KIST, 공동교신저자) 등이 주도한 본 연구는 한국연구재단 기초연구사업, 보건복지부 암정복추진연구개발사업, 농촌진흥청 차세대 바이오그린 21사업, GIST 개발과제 및 KIST 기관고유사업 등의 지원을 받아 수행됐으며, 네이처 자매지인 네이처 커뮤니케이션즈(Nature Communications, IF 12.353)에 7월 17일(화) 온라인판에 게재됐다.